Dům, design, rekonstrukce, výzdoba. Dvůr a zahrada. Vlastníma rukama

Vlastnosti všech rostlinných organismů a vnitřní struktury vlastní jednotlivým druhům jsou určovány mnohostranným, neustále se měnícím dopadem životní prostředí... Významný je vliv faktorů, jako je klima, půda, stejně jako koloběh látek a energie. Tradičně se pro identifikaci vlastností léčivých přípravků nebo potravinářských výrobků stanoví podíly látek, které lze izolovat analyticky. Tyto samostatně odebrané látky však nemohou pokrýt všechny vnitřní vlastnosti, například léčivých a aromatických rostlin. Proto takové popisy jednotlivých vlastností rostlin nemohou uspokojit všechny naše potřeby. Vyčerpávající popis vlastností bylinných léčivých přípravků, včetně biologické aktivity, vyžaduje komplexní a komplexní studii. Existuje řada technik, které vám umožňují identifikovat kvalitu a množství biologicky aktivních látek ve složení rostliny a také místa jejich akumulace.

Luminiscenční mikroskopická analýza Je založen na skutečnosti, že biologicky aktivní látky obsažené v rostlině vytvářejí v luminiscenčním mikroskopu zářivou barvu a různé chemické látky se vyznačují různými barvami. Alkaloidy tedy dávají žlutou barvu a glykosidy - oranžovou. Tato metoda se používá hlavně k identifikaci míst akumulace účinných látek v rostlinných tkáních a intenzita luminiscence udává větší či menší koncentraci těchto látek. Fytochemická analýza je určen k identifikaci kvalitativního a kvantitativního ukazatele obsahu účinných látek ve východní oblasti. Ke stanovení kvality se používají chemické reakce. Množství účinných látek v rostlině je hlavním ukazatelem její dobré kvality, proto je jejich objemová analýza prováděna také pomocí chemických metod. Pro studium rostlin obsahujících účinné látky, jako jsou alkaloidy, kumariny,

glavony, které nevyžadují jednoduchou souhrnnou analýzu, ale také jejich rozdělení na složky, se nazývají chromatografická analýza. Metoda chromatografické analýzy byl poprvé představen v roce 1903 botanikem

Color, a od té doby byly vyvinuty jeho různé možnosti, které mají nezávislé

význam. Tento způsob separace směsi g-ceetv na složky je založen na rozlišení jejich fyzikálních a chemických vlastností. Fotograficky je pomocí panoramatické chromatografie možné zviditelnit vnitřní struktura rostliny, podívejte se na linie, tvary a barvy rostliny. Takové obrazy, získané z vodných extraktů, jsou uchovávány na filtračním papíře stříbřitého dusičnanu a reprodukovány. Metoda interpretace chromatogramů se úspěšně vyvíjí. Tuto techniku ​​podporují data získaná pomocí jiných již známých osvědčených technik.

Na základě cirkulujících chromodiagramů vývoj metody panoramatické chromatografie nadále určuje kvalitu rostliny přítomností v ní koncentrovaných živin. Výsledky získané touto metodou by měly být podpořeny údaji z analýzy úrovně kyselosti rostliny, interakce enzymů obsažených v jejím složení atd., Skladování a ve stadiu přímého příjmu lékových forem, aby se zvýšit v něm obsah cenných účinných látek.

Aktualizováno: 2019-07-09 22:27:53

• Bylo zjištěno, že přizpůsobení těla různým vlivům prostředí je zajištěno odpovídajícími výkyvy ve funkční činnosti orgánů a tkání, centrálního nervového

Hrubá analýza se provádí buď na listech určité polohy na rostlině, nebo v celé nadzemní části, nebo v jiných indikačních orgánech.
Diagnostika podle hrubá analýza listy - zralý, dokončený růst, ale aktivně fungující, se nazývalo „diagnostika listů“. Navrhli to francouzští vědci Lagatu a máma a podpořila ho Lundegard. V současné době je tento typ chemické diagnostiky široce používán jak v zahraničí, tak u nás, zejména u rostlin, v jejichž kořenech jsou dusičnany téměř úplně obnoveny, a proto není možné pomocí této formy řídit výživu dusíku ve vzdušných částech (jablko a jiné semeno a peckové ovoce, jehličnany, bohaté na třísloviny, cibulovité atd.).
Při hromadných analýzách listů nebo jiných částí rostlin se používají konvenční metody spalování organické hmoty ke stanovení N, P, K, Ca, Mg, S a dalších prvků v nich. Častěji se stanovení provádí ve dvou vážených porcích: v jednom se dusík určuje podle Kjeldahla, ve druhém - zbytek prvků po mokrém, polosuchém nebo suchém popelení. Při mokrém spalování se používá buď silný H2SO4 s katalyzátory, nebo smíchaný s HNO3 nebo s HClO4 nebo s H2O2. Při suchém spalování je nutná pečlivá kontrola teploty, protože během spalování při teplotách nad 500 ° C může dojít ke ztrátám P, S a dalších prvků.
Z iniciativy Francie v roce 1959 byl zorganizován interinstitucionální výbor pro studium techniky diagnostiky chemických listů, který se skládá z 13 francouzských, 5 belgických, 1 holandského, 2 španělského, 1 italského a 1 portugalského institutu. V 25 laboratořích těchto ústavů byly provedeny chemické analýzy stejných vzorků listů 13 plodin (pole a zahrada) na celkový obsah N, P, K, Ca, Mg, Fe, Mn, Cu a Zn. To umožnilo komisi po matematickém zpracování dat doporučit metody pro získání standardních vzorků listů a poskytnout standardní metody jejich chemické analýzy ke kontrole přesnosti těchto analýz v diagnostice listů.
Doporučuje se spalovat vzorky listů následovně: ke stanovení celkového dusíku podle Kjeldahla se spaluje s H2SO4 (měrná hmotnost 1,84), s katalyzátory K2SO4 + CuSO4 a selenem. K určení dalších prvků se používá suché spalování vzorku v platinové misce s postupným (za 2 hodiny) zahříváním mufle na 450 ° C; po 2 hodinách chlazení v muflu se popel rozpustí ve 2–3 ml vody + 1 ml HCl (měrná hmotnost 1,19). Odpařujte na plotýnce, dokud se neobjeví první pára. Přidejte vodu a přefiltrujte do odměrné baňky o objemu 100 cm3. Sraženina s filtrem se popelí při 550 ° C (maximum), přidá se 5 ml kyseliny fluorovodíkové. Suší se na plotně při teplotě nepřesahující 250 ° C. Po ochlazení přidejte 1 ml stejné HCl a znovu zfiltrujte do stejné baňky, opláchněte teplou vodou. Filtrát, doplněný vodou na 100 ml, se používá k analýze obsahu makro a mikroelementů.
Existuje poměrně velká variace ve způsobech spalování vzorků rostlin, které se liší hlavně v typech rostlin - bohatých na tuky nebo křemík atd., A v úkolech určování určitých prvků. Dost Detailní popis techniku ​​používání těchto metod suchého popela dal polský vědec Novosilsky. Také poskytli popisy různé způsoby mokré spalování pomocí určitých oxidantů: H2SO4, HClO4, HNO3 nebo H2O2 v jedné nebo jiné kombinaci, v závislosti na prvcích, které mají být stanoveny.
Aby se analýza urychlila, ale ne na úkor přesnosti, hledají se způsoby takové metody spalování rostlinného vzorku, která by umožnila určit několik prvků v jednom vzorku. VV Pinevich použil ke stanovení N a P v jednom vzorku popálení s H2SO4 a následně přidal 30% H2O2 (zkontroloval, zda neobsahuje P). Tento princip popelení, s některými upřesněními, našel široké uplatnění v mnoha laboratořích v Rusku.
Další široce používanou metodu kyselého spalování vzorku pro stanovení několika prvků v něm současně navrhl K.E. Ginzburg, G.M. Shcheglova a E.A. Wulfius a je založen na použití směsi H2SO4 (specifická hmotnost 1,84) a HClO4 (60%) v poměru 10: 1 a směs kyselin je předběžně připravena pro celou dávku analyzovaného materiálu.
Pokud je nutné stanovit síru v rostlinách, popsané metody spalování nejsou vhodné, protože obsahují kyselinu sírovou.
P.X. Aydinyan a jeho spolupracovníci navrhli spálit vzorek rostliny, aby v ní určili síru, smícháním s bertholletovou solí a čistým pískem. Metoda V.I. Kuznetsova a jeho spolupracovníků je mírně revidovanou metodou Schoenigera. Princip metody spočívá v rychlém spalování vzorku v baňce naplněné kyslíkem, po níž následuje titrace výsledných síranů roztokem chloridu barnatého s indikátorem nitchromase-metal pro barium. Aby byla zajištěna vyšší přesnost a reprodukovatelnost výsledků analýzy, doporučujeme nechat výsledný roztok projít kolonou s iontoměničovou pryskyřicí ve formě H +, aby se roztok zbavil kationtů. Takto získaný roztok síranu by měl být odpařen na plotýnce na objem 7 až 10 ml a po ochlazení titrován.
Novosilsky, poukazující na velké ztráty síry při suchém popelu, uvádí recepty na popelárny pro tyto analýzy. Autor považuje za jeden z nejjednodušších a nejrychlejších způsobů spalování podle Butters a Chenery kyselinou dusičnou.
Stanovení obsahu každého prvku ve vzorku popeleném tak či onak se provádí různými metodami: kolorimetrickou, komplexometrickou, spektrofotometrickou, neutronovou aktivací, pomocí autoanalyzátorů atd.

Historie studia fyziologie rostlin. Hlavní sekce fyziologie rostlin

Fyziologie rostlin jako obor botaniky.

Téma práce musí být dohodnuto s kurátorem disciplíny volby (volitelné) A.N. Luferov.

Vlastnosti struktury rostlinné buňky, chemické složení.

1. Historie studia fyziologie rostlin. Hlavní sekce a úkoly fyziologie rostlin

2. Základní výzkumné metody fyziologie rostlin

3. Struktura rostlinné buňky

4. Chemické složení rostlinné buňky

5. Biologické membrány

Fyziologie rostlin je věda, která studuje životní procesy probíhající v rostlinném organismu.

Informace o procesech probíhajících v živé rostlině byly shromažďovány při vývoji botaniky. Rozvoj fyziologie rostlin jako vědy byl dán využitím nových, pokročilejších metod chemie, fyziky a potřeb zemědělství.

Fyziologie rostlin vznikla v 17.-18. Století. Počátek fyziologie rostlin jako vědy byl položen experimenty Ya.B.Van Helmonta na výživu rostlin vodou (1634).

Výsledky řady fyziologických experimentů prokazujících existenci sestupných a vzestupných proudů vody a živin, vzdušné výživy rostlin jsou prezentovány v klasických dílech italského biologa a lékaře M. Malpigy „Plant Anatomy“ (1675-1679) a anglický botanik a lékař S. Geils „Statické rostliny“ (1727). V roce 1771 anglický vědec D. Priestley objevil a popsal proces fotosyntézy - vzdušné výživy rostlin. V roce 1800 vydal J. Senebier pojednání „Fyziologie vegetace“ v pěti svazcích, ve kterých byly shromážděny, zpracovány a interpretovány všechny do té doby známé údaje, byl navržen termín „fyziologie rostlin“, úkoly, metody studia fyziologie rostlin byly stanoveny, experimentálně prokázáno, že oxid uhličitý je zdrojem uhlíku ve fotosyntéze položil základy pro fotochomii.

V XIX - XX století byla v oblasti fyziologie rostlin učiněna řada objevů:

1806 - T.A. Knight popsal a experimentálně studoval fenomén geotropismu;

1817 - P. J. Peltier a J. Cavantu izolovali z listů zelený pigment a pojmenovali ho chlorofyl;

1826 - G. Dutroche objevil fenomén osmózy;

1838-1839 - T. Schwann a M.Ya. Schleiden doložili buněčnou teorii struktury rostlin a živočichů;

1840 - J. Liebig rozvinul teorii minerální výživa rostliny;

1851 - W. Hoffmeister objevil střídání generací ve vyšších rostlinách;

1859 - Charles Darwin položil základy evoluční fyziologie rostlin, fyziologie květů, heterotrofní výživy, pohybu a podrážděnosti rostlin;

1862 - Yu. Saks ukázal, že škrob je produkt fotosyntézy;

1865 - 1875 - K.A. Timiryazev studoval roli červeného světla v procesech fotosyntézy, vytvořil představu o kosmické roli zelených rostlin;

1877 - V. Pfeffer objevil zákony osmózy;

1878-1880 - G. Gelriegel a J. B. Bussengo prokázali fixaci atmosférického dusíku v luštěninách v symbióze s nodulárními bakteriemi;

1897 M. Nentsky a L. Marhlevsky objevili struktury chlorofylu;

1903 - G. Klebs vyvinul doktrínu vlivu environmentálních faktorů na růst a vývoj rostlin;

1912 - V.I. Palladin předložil myšlenku anaerobních a aerobních fází dýchání;

1920 W.W. Garner a G.A. Allard objevili fenomén fotoperiodismu;

1937 - G.A. Krebs popsal cyklus kyselina citronová;

1937 - M.Kh Chailakhyan předložil hormonální teorii vývoje rostlin;

1937-1939 - G.Kalkar a V.A.Blitzer objevili oxidační fosforylaci;

1946 - 1956 - M. Calvin a jeho kolegové rozluštili hlavní cestu uhlíku během fotosyntézy;

1943-1957 - R. Emerson experimentálně prokázal existenci dvou fotosystémů;

1954 - D.I.Arnon a kol. objevena fotofosforylace;

1961-1966 - P. Mitchell vyvinul chemiosmotickou teorii konjugace oxidace a fosforylace.

A také další objevy, které určily vývoj fyziologie rostlin jako vědy.

V 19. století byly rozlišeny hlavní části fyziologie rostlin - tyto:

1. fyziologie fotosyntézy

2. fyziologie vodního režimu rostlin

3. fyziologie minerální výživy

4. fyziologie růstu a vývoje

5. fyziologie odporu

6. fyziologie reprodukce

7. fyziologie dýchání.

Jakýkoli jev v rostlině však nelze pochopit v rámci pouze jedné sekce. Proto ve druhé polovině XX. ve fyziologii rostlin existuje tendence splynout v jeden celek biochemie a molekulární biologie, biofyziky a biologického modelování, cytologie, anatomie a genetiky rostlin.

Moderní fyziologie rostlin je základní vědou, jejím hlavním úkolem je studovat vzorce života rostlin. Má ale velký praktický význam, takže jeho druhým úkolem je rozvíjet se teoretické základy získání maximálních výnosů zemědělských, průmyslových a léčivých plodin. Fyziologie rostlin je věda budoucnosti, jejím třetím, dosud nevyřešeným problémem, je vývoj zařízení pro provádění procesů fotosyntézy v umělých podmínkách.

Moderní fyziologie rostlin využívá celý arzenál vědeckých metod, které dnes existují. Jsou to mikroskopické, biochemické, imunologické, chromatografické, radioizotopové atd.

Zvažte instrumentální výzkumné metody, které jsou široce používány při studiu fyziologických procesů v rostlině. Instrumentální metody pro práci s biologickými objekty jsou rozděleny do skupin podle jakéhokoli kritéria:

1. V závislosti na tom, kde jsou citlivé prvky zařízení umístěny (na zařízení nebo ne): kontaktní a vzdálený;

2. Podle povahy získané hodnoty: kvalitativní, semikvantitativní a kvantitativní. Kvalitativní - výzkumník dostává informace pouze o přítomnosti nebo nepřítomnosti látky nebo procesu. Semi -kvantitativní - výzkumník může porovnat schopnosti jednoho objektu s ostatními podle intenzity procesu, podle obsahu látek (pokud je vyjádřen nikoli v číselné formě, ale například ve formě stupnice). Kvantitativní - výzkumník dostává číselné ukazatele, které charakterizují proces nebo obsah látek.

3. Přímé i nepřímé... Při použití přímých metod dostává výzkumník informace o vyšetřovaném procesu. Nepřímé metody jsou založeny na měření jakýchkoli doprovodných veličin, tak či onak souvisejících se zkoumaným.

4. V závislosti na podmínkách experimentu jsou metody rozděleny na laboratoř a pole.

Při provádění výzkumu na rostlinných předmětech lze provádět následující typy měření:

1. Morfometrie (měření různých morfologických parametrů a jejich dynamiky (například listová plocha, poměr ploch nadzemních a podzemních orgánů atd.)

2. Měření hmotnosti. Například stanovení denní dynamiky akumulace vegetativní hmoty

3. Měření koncentrace roztoku, chemického složení vzorků atd. pomocí konduktometrických, potenciometrických a dalších metod.

4. Studium výměny plynu (při studiu intenzity fotosyntézy a výměny plynu)

Morfometrické ukazatele lze určit vizuálním počítáním, měřením pravítkem, milimetrovým papírem atd. K určení některých ukazatelů, například celkového objemu kořenového systému, se používají speciální instalace - nádoba s odstupňovanou kapilárou. Objem kořenového systému je určen objemem vytlačené vody.

Při studiu procesu použijte různé metody... Chcete -li například určit úroveň transpirace, použijte:

1. Způsoby vážení (počáteční hmotnost listu a jeho hmotnost po chvíli);

2. Teplota (použijte speciální klimatické komory);

3. Pomocí porometrů se stanoví vlhkost komory, kde je umístěna zkušební rostlina.

FEDERÁLNÍ VZDĚLÁVACÍ AGENTURA

STÁTNÍ UNIVERZITA VORONEZH

INFORMACE A ANALYTICKÁ PODPORA OCHRANY ŽIVOTNÍHO PROSTŘEDÍ V ZEMĚDĚLSTVÍ

Studijní příručka pro univerzity

Sestavil L.I. Brekhova L.D. Stakhurlova D.I. Shcheglov A.I. Thunderman

VORONEZH - 2009

Schváleno Vědeckou a metodickou radou Fakulty biologie a půdní vědy - Protokol č. 10 ze 4. června 2009.

Recenzent, doktor biologických věd, profesor L.A. Yablonskikh

Učební pomůcka byla připravena na katedře půdní vědy a managementu půdy, biologické fakulty a půdní vědy Státní univerzity Voroněž.

Specialita: 020701 - Půdní věda

Nedostatek nebo přebytek jakéhokoli chemického prvku způsobuje narušení normálního průběhu biochemických a fyziologických procesů v rostlinách, což v konečném důsledku mění výnos a kvalitu rostlinné výroby. Stanovení chemického složení rostlin a ukazatelů kvality produktu proto umožňuje identifikovat nepříznivé ekologické předpoklady růst kulturní i přirozené vegetace. V tomto ohledu je chemická analýza rostlinného materiálu nedílnou součástí činností na ochranu životního prostředí.

Praktický průvodce informační a analytickou podporou ochrany životního prostředí v zemědělství sestaveno v souladu s programem laboratorních studií na téma „Biogeocenologie“, „Analýza rostlin“ a „Environmentální aktivita v zemědělství“ pro studenty 4. a 5. ročníků půdního oddělení fakulty biologické půdy Voroněžské státní univerzity.

TECHNIKA PRO ODBĚR VZORKŮ ROSTLIN A PŘÍPRAVU K ANALÝZE

Odběr vzorků rostlin je velmi zásadním momentem v účinnosti diagnostiky výživy rostlin a hodnocení jejich dostupnosti půdních zdrojů.

Celá plocha zkoumané plodiny je vizuálně rozdělena do několika sekcí, v závislosti na její velikosti a stavu rostlin. Pokud jsou v osevních oblastech zvýrazněny jasně horší rostliny, pak jsou tyto oblasti označeny na polní mapě, zjistí se, zda je špatný stav rostlin důsledkem fyto-choroby antoilu, místního zhoršení vlastností půdy nebo jiného růstu podmínky. Pokud všechny tyto faktory nevysvětlují důvody špatný stav rostlin, lze předpokládat, že je narušena jejich výživa. To je ověřeno diagnostickými metodami rostlin. Take pro

Z míst s nejhoršími a nejlepšími rostlinami a půdou pod nimi a jejich analýzou zjišťují důvody zhoršení stavu rostlin a úroveň jejich výživy.

Pokud vzhledem ke stavu rostlin není výsev rovnoměrný, pak by při odběru vzorků mělo být zajištěno, aby vzorky odpovídaly průměrnému stavu rostlin v této oblasti pole. Rostliny s kořeny jsou odebírány z každého vybraného pole podél dvou diagonál. Používají se: a) k zohlednění nárůstu hmotnosti a průběhu tvorby orgánů - budoucí struktura plodiny a b) pro chemickou diagnostiku.

V raných fázích (se dvěma nebo třemi listy) by vzorek měl obsahovat alespoň 100 rostlin na hektar. Později u obilovin, lnu, pohanky, hrachu a dalších - minimálně 25 - 30 rostlin na hektar. U velkých rostlin (dospělá kukuřice, zelí atd.) Se spodní zdravé listy odebírají nejméně z 50 rostlin. Aby se vzala v úvahu akumulace ve fázích a odstranění plodinou, je do analýzy zahrnuta celá nadzemní část rostliny.

Mít dřeviny - ovocné, bobulovité, hroznové, okrasné a lesní - díky jejich zvláštnostem změny související s věkem, odběr vzorků plodů atd. je poněkud obtížnější než u polních plodin. Existují následující věkové skupiny: sazenice, planě rostoucí, roubované dvouleté, sazenice, mladé a rodící (začínající rodit ovoce, v plných a blednoucích rodících) stromech. U sazenic je v prvním měsíci jejich růstu do vzorku zahrnuta celá rostlina, následuje její rozdělení na orgány: listy, stonky a kořeny. Ve druhém a další měsíce vyberou se plně tvarované listy, obvykle první dva po nejmladším, počítají se od vrcholu. U dvouleté zvěře se odeberou také první dva vytvořené listy, počítáno od vrcholu růstového výhonu. Z roubovaných dvouletých a sazenic, stejně jako z dospělých, se odeberou střední listy růstových výhonků.

Mít bobule - angrešt, rybíz a další - jsou vybrány z výhonků aktuálního růstu 3-4 listů z 20 keřů tak, aby ve vzorku

bylo tam minimálně 60 - 80 listů. Listy dospělých se odebírají z jahod ve stejném množství.

Obecným požadavkem je sjednocení techniky odběru vzorků, zpracování a skladování vzorků: odebírání striktně stejných částí ze všech rostlin podle jejich úrovně, stáří, umístění na rostlině, absence choroby atd. Záleží také na tom, zda byly listy na přímém slunci nebo ve stínu, a ve všech případech by měly být vybrány listy stejného umístění ve vztahu ke slunečnímu světlu, nejlépe na světle.

Při analýze kořenového systému je střední laboratorní vzorek pečlivě promyt a voda z vodovodu, opláchnuté v destilované vodě a vysušené filtračním papírem.

Laboratorní vzorek zrna nebo semen se odebere z mnoha míst (sáček, krabice, stroj) sondou, poté se rovnoměrně rozloží na papír ve formě obdélníku, rozdělí se na čtyři části a materiál se odebere ze dvou protilehlých částí na požadované množství pro analýzu.

Jeden z důležité body při přípravě rostlinného materiálu k analýze je správné jej upevnit, pokud se analýzy nemají provádět v čerstvý materiál.

Pro chemické posouzení rostlinného materiálu podle celkového obsahu živin (N, P, K, Ca, Mg, Fe atd.) Se vzorky rostlin suší na vzduchu sušící stav v sušárně při teplotě

teplota 50 - 60 ° nebo na vzduchu.

V analýzách, na jejichž základě budou vyvozeny závěry o stavu živých rostlin, by měl být použit čerstvý materiál, protože vadnutí způsobuje významnou změnu ve složení látky nebo snížení jejího množství a dokonce i mizení látek obsaženo v

živé rostliny. Například celulóza není ovlivněna degradací, ale škrob, bílkoviny, organické kyseliny a zejména vitamíny jsou degradovány po několika hodinách vadnutí. To nutí experimentátora provádět analýzy v čerstvém materiálu ve velmi krátkém čase, což není vždy možné. Proto se často používá fixace rostlinného materiálu, jejímž účelem je stabilizovat nestabilní rostlinné látky. V tomto případě má inaktivace enzymů rozhodující význam. V závislosti na úkolech experimentu se používají různé metody fixace rostlin.

Parní fixace. Tento typ fixace rostlinného materiálu se používá tam, kde není potřeba určovat ve vodě rozpustné sloučeniny (buněčná míza, sacharidy, draslík atd.). Během zpracování surového rostlinného materiálu může dojít k tak silné autolýze, že se složení konečného produktu někdy výrazně liší od výchozího materiálu.

V praxi se parní fixace provádí následovně: uvnitř vodní lázně je zavěšeno kovová mřížka, horní část lázně je pokryta hustým nehořlavým materiálem a voda je ohřívána k prudkému uvolnění páry. Poté se na síť uvnitř lázně umístí čerstvý rostlinný materiál. Doba fixace 15 - 20 min. Poté se rostliny suší

jsou uchovávány v termostatu při teplotě 60 °.

Teplotní fixace. Rostlinný materiál je umístěn do pytlů z kraftového papíru a šťavnaté ovoce a strouhaná zelenina jsou volně umístěny do smaltovaných nebo hliníkových kyvet. Materiál se uchovává 10 - 20 minut při teplotě 90 - 95 °. Tím se deaktivuje většina z enzymy. Poté se listová hmota a plody, které ztratily turgor, suší v sušárně při teplotě 60 ° s větráním nebo bez něj.

Při použití této metody fixace rostlin je třeba mít na paměti, že dlouhodobé sušení rostlinného materiálu při teplotě

Teplota 80 ° a vyšší vede ke ztrátám a změnám látek v důsledku chemických transformací (tepelný rozklad určitých látek, karamelizace uhlovodíků atd.), Jakož i kvůli těkavosti amonných solí a některých organických sloučenin. Kromě toho teplota surového rostlinného materiálu nemůže dosáhnout teploty okolí (sušárna), dokud se voda neodpaří a veškerý tepelný příkon nepřestane být přeměňován na latentní výparné teplo.

Rychlé a pečlivé sušení rostlinného vzorku je v některých případech také považováno za přijatelný a přijatelný způsob fixace. Pokud je tento proces proveden obratně, mohou být odchylky ve složení sušiny malé. V tomto případě dochází k denaturaci proteinů a inaktivaci enzymů. Sušení se zpravidla provádí v sušárnách (termostatech) nebo ve speciálních sušárnách. Materiál se suší mnohem rychleji a spolehlivěji, pokud skrz skříň (komoru) cirkuluje ohřátý vzduch. Nejvhodnější teplota pro sušení

šití od 50 do 60 °.

Sušený materiál zůstává lépe ve tmě a chladu. Protože mnoho látek obsažených v rostlinách je schopno samooxidace i v suchém stavu, doporučuje se skladovat sušený materiál v těsně uzavíratelných nádobách (baňky se zátkou, exsikátorem atd.), Naplněné až po vrchol materiál tak, aby v nádobách nezůstalo mnoho vzduchu.

Zmrazení materiálu. Rostlinný materiál je velmi dobře konzervován při teplotách od -20 do -30 ° za předpokladu, že zmrazení proběhne dostatečně rychle (ne déle než 1 hodinu). Výhoda skladování rostlinného materiálu ve zmrazeném stavu je dána jak efektem ochlazování, tak dehydratací materiálu v důsledku přechodu vody do pevného stavu. Je třeba mít na paměti, že při zmrazování

Enzymy jsou deaktivovány pouze dočasně a po rozmrazení mohou v rostlinném materiálu dojít k enzymatickým transformacím.

Ošetřování rostlin organickými rozpouštědly. Jako

Všechny fixační látky mohou být použity vroucí alkohol, aceton, ether atd. Fixace rostlinného materiálu tímto způsobem se provádí jeho spuštěním do vhodného rozpouštědla. U této metody však dochází nejen k fixaci rostlinného materiálu, ale také k extrakci řady látek. Takovou fixaci lze tedy použít pouze tehdy, když je předem známo, že látky, které mají být stanoveny, nejsou regenerovány daným rozpouštědlem.

Po zafixování vysušeno vzorky rostlin jsou rozdrceny nůžkami a poté v mlýně. Drcený materiál se proseje sítem o průměru otvoru 1 mm. Současně není ze vzorku nic vyhozeno, protože odstraněním části materiálu, který neprošel sítem z prvního prosévání, měníme tím kvalitu průměrného vzorku. Velké částice se nechají projít mlýnem a znovu se prosejí. Zbytek rozetřete na sítu v hmoždíři.

Z takto připraveného laboratorního průměru se odebere analytický vzorek. K tomu je rostlinný materiál distribuovaný v tenké rovnoměrné vrstvě na list lesklého papíru diagonálně rozdělen na čtyři části. Poté se odstraní dva protilehlé trojúhelníky a zbývající hmota se opět rozloží v tenké vrstvě na celý list papíru. Znovu se nakreslí diagonály a opět se odstraní dva protilehlé trojúhelníky. To se provádí, dokud množství látky požadované pro analytický vzorek nezůstane na listu. Vybraný analytický vzorek se přenese do skleněná nádoba se zemní zátkou. V tomto stavu může být uložen na neurčito. Hmotnost analytického vzorku závisí na množství a metodě výzkumu a pohybuje se od 50 do několika set gramů rostlinného materiálu.

Všechny analýzy rostlinného materiálu by měly být prováděny se dvěma vzorky odebranými souběžně. Pouze těsné výsledky mohou potvrdit správnost provedené práce.

S rostlinami by se mělo manipulovat v suché a čisté laboratoři, která neobsahuje páry amoniaku, těkavé kyseliny a další sloučeniny, které mohou ovlivnit kvalitu vzorku.

Výsledky analýz lze vypočítat jak pro vzduchem vysušený, tak pro absolutně suchý vzorek látky. Ve stavu suchém na vzduchu je množství vody v materiálu v rovnováze s vodní párou ve vzduchu. Tato voda se nazývá hygroskopická a její množství závisí jak na rostlině, tak na stavu vzduchu: čím je vzduch vlhčí, tím více je hygroskopická voda v rostlinném materiálu. K převodu dat na sušinu je nutné určit množství hygroskopické vlhkosti ve vzorku.

STANOVENÍ SUCHÉ LÁTKY A HYGROSKOPICKÉ VLHKOSTI V VZDUCHOVÉM MATERIÁLU

V chemické analýze je kvantitativní obsah konkrétní složky vypočítán na základě sušiny. Proto je před analýzou stanoveno množství vlhkosti v materiálu a tím nalezeno množství absolutně sušiny v něm.

Průběh analýzy. Analytický vzorek látky se nanese v tenké vrstvě na list lesklého papíru. Potom se špachtlí z různých míst látky rozložené na listu malé její špetky odeberou do skleněné lahve předem vysušené na konstantní hmotnost. Vzorek by měl mít přibližně 5 g. Šarže spolu se vzorkem se zváží na analytické váze a umístí se do termostatu, jehož teplota se udržuje na 100–1050. Poprvé v termostatu je otevřená vážicí láhev uchovávána po dobu 4-6 hodin. Po uplynutí této doby se vážicí láhev z termostatu po 20-30 převede do exsikátoru pro chlazení

minut se váží vážicí láhev. Poté se láhev otevře a umístí zpět na 2 hodiny do termostatu (na stejnou teplotu). Sušení, chlazení a vážení se opakují, dokud vážicí láhev nedosáhne konstantní hmotnosti (rozdíl mezi posledními dvěma váženími musí být menší než 0,0003 g).

Procentní podíl vody se vypočítá podle vzorce:

kde: x je procento vody; c - odvážené množství rostlinného materiálu před sušením, g; в1 - odvážené množství rostlinného materiálu po vysušení.

Vybavení a náčiní:

1) termostat;

2) skleněné láhve.

Formulář pro záznam výsledků

	Hmotnost vážicí láhve s		Hmotnost vážicí láhve s
			záviset na
	vážil až	Váha do						Vážení podle
			po vyschnutí-
	vysychání	vysychání						po vysu-
								šití, g

STANOVENÍ "SUROVÉHO" popelu metodou SUCHÉHO POPELU

Popel je zbytek získaný po spalování a kalcinaci organické hmoty. Při spalování se odpařuje uhlík, vodík, dusík a částečně kyslík a zůstávají jen netěkavé oxidy.

Obsah a složení popelnatých prvků rostlin závisí na druhu, růstu a vývoji rostlin a zejména na půdně klimatických a agrotechnických podmínkách jejich pěstování. Koncentrace prvků popela se v různých tkáních a orgánech rostlin výrazně liší. Obsah popela v listech a bylinných orgánech rostlin je tedy mnohem vyšší než v semenech. V listech je více popela než ve stoncích,

Při určování potřeby rostlin pro hnojiva spolu s agrochemické analýzy půdní, polní a vegetační experimenty, mikrobiologické a další metody, začalo se využívat stále více metod diagnostiky rostlin.
V současné době jsou široce používány následující metody diagnostiky rostlin: 1) chemická analýza rostlin, 2) vizuální diagnostika a 3) vstřikování a postřik. Chemický rozbor rostliny je nejběžnější metodou diagnostiky potřeb hnojiv.
Chemickou diagnostiku představují tři typy: 1) listová diagnostika, 2) tkáňová diagnostika a 3) rychlé (expresní) metody analýzy rostlin.
Důležitými fázemi diagnostiky rostlin pomocí chemické analýzy jsou: 1) odebrání vzorku rostliny k analýze; 2) s přihlédnutím k doprovodným podmínkám růstu rostlin; 3) chemická analýza rostlin; 4) zpracování analytických dat a vypracování závěru o potřebě rostlin v hnojivech.
Odebírání vzorku rostlin k analýze. Při výběru rostlin k analýze by mělo být zajištěno, aby odebrané rostliny odpovídaly průměrnému stavu rostlin v dané oblasti pole. Pokud je očkování homogenní, lze omezit jeden vzorek; pokud existují skvrny lépe vyvinutých nebo naopak hůře vyvinutých rostlin, pak se z každého z těchto míst odebere samostatný vzorek, který určí příčinu změněného stavu rostliny. Obsah živin u dobře vyvinutých rostlin lze v tomto případě použít jako indikátor normálního složení daného rostlinného druhu.
Při provádění analýz je nutné sjednotit techniku ​​odběru a přípravy vzorku: odebírání stejných částí rostliny podle úrovně, polohy na rostlině a fyziologického věku.
Výběr části závodu pro analýzu závisí na metodě chemické diagnostiky. Pro získání spolehlivých údajů je nutné odebrat vzorky nejméně z deseti rostlin.
U stromových plodin je odběr vzorků rostlin kvůli zvláštnostem jejich změn souvisejících s věkem poněkud obtížnější než u polních plodin. Doporučuje se provádět výzkum v následujících věkových obdobích: sazenice, sazenice, mladé a ovocné rostliny. Listy, jejich řapíky, pupeny, výhonky nebo jiné orgány by měly být odebrány z horní třetiny výhonků ze střední zóny koruny stromů nebo keřů stejného stáří a bonitetu, dodržující stejný řád, a to: buď pouze z ovoce, nebo pouze z neplodných výhonků, nebo z výhonků aktuálního růstu, nebo listy na přímém slunci nebo rozptýleném světle. Všechny tyto body je třeba vzít v úvahu, protože všechny ovlivňují chemické složení listů. Je třeba poznamenat, že nejlepší korelace mezi chemické složení list a sklizeň ovoce se získá, když se jako vzorek odebere list, v jehož lůně se vyvine poupě.
V jaké fázi vývoje rostlin by měly být odebrány vzorky pro analýzu? Pokud jde o získání nejlepší korelace s výnosem, pak je nejlepší analýza rostlin ve fázi květu nebo zrání. Lundegard, Kolarzhik a další vědci se tedy domnívají, že kvetení je takovou fází pro všechny rostliny, protože v tuto chvíli jsou hlavní růstové procesy u konce a nárůst hmoty „nezředí“ procento látek.
Vyřešit problém, jak změnit výživu rostlin, aby byla zajištěna formace nejlepší sklizeň„Je nutné analyzovat rostliny v dřívějších obdobích vývoje a ne jednou, ale několikrát (tři nebo čtyři), počínaje výskytem jednoho nebo dvou listů.
Doba vzorkování. I termín: pro jarní obiloviny (pšenice, oves, kukuřice) - ve fázi tří listů, to znamená před začátkem diferenciace rudimentárního klasu nebo laty; pro len - začátek rybí kosti; u brambor, luštěnin, bavlny a dalších - fáze čtyř až pěti pravých listů, tedy před pučením; u cukrové řepy fáze tří pravých listů.
II termín: pro jarní obiloviny - ve fázi pěti listů, to znamená ve fázi zavádění; pro řepu - ve fázi rozvinutí šestého listu; pro všechny ostatní - během tvorby prvních malých zelených pupenů, to znamená až do samého začátku pučení.
III termín: ve fázi květu; pro řepu - při rozkládání osmého až devátého listu.
IV termín: ve fázi mléčné zralosti semen; pro řepu - týden před sklizní.
U dřevin a bobulí se odebírají vzorky podle následujících fází tvorby plodin: a) před květem, tj. Na začátku silného růstu, b) kvetení, tj. V období silného růstu a fyziologického odlupování vaječníky, c) tvorba plodů, d) zrání a sklizeň a e) období podzimního opadu listů.
Při určování načasování odběru vzorků rostlin je také nutné vzít v úvahu období růstu a vývoje, během kterého klesají kritické úrovně výživy. Pojem „kritické hladiny“ označuje nejnižší koncentrace živin v rostlinách v kritickém období jejich vývoje, tj. Koncentrace, pod kterými dochází ke zhoršení stavu rostliny a snížení výnosu. Optimálním složením rostliny se rozumí takový obsah živin v ní v kritických fázích jejího vývoje, který zajišťuje vysoký výnos.
Hodnoty kritických úrovní a optimální složení jsou uvedeny pro některé plodiny níže. Vzorky se odebírají ve všech případech ve stejnou denní dobu, nejlépe ráno (v 8–9 hodin), aby se zabránilo změnám ve složení rostlin v důsledku každodenní stravy.
Zohlednění doprovodných podmínek. Není vždy správné soudit dostatečnost nebo nedostatečnost výživy rostlin s určitými prvky pouze z údajů chemické analýzy. Je známo mnoho skutečností, když nedostatek jedné nebo několika živin, zpoždění fotosyntézy nebo porušení vodních, tepelných a jiných životně důležitých režimů může způsobit akumulaci jednoho nebo jiného prvku v rostlině, což by v žádném případě nemělo charakterizovat dostatečnost tento prvek v živném médiu (půdě). Vyhnout se možné chyby a nepřesnosti závěrů, je nutné porovnat data chemické analýzy rostlin s řadou dalších ukazatelů: s hmotností, růstem a rychlostí vývoje rostlin v době odběru vzorků a s konečným výnosem, s vizuální diagnostické příznaky, se zvláštnostmi zemědělské technologie, s agrochemickými vlastnostmi půdy, s povětrnostními podmínkami a řadou dalších ukazatelů ovlivňujících výživu rostlin. Proto je jednou z nejdůležitějších podmínek úspěšného používání diagnostiky rostlin nejpodrobnější účetnictví všech těchto ukazatelů pro jejich následné srovnání mezi sebou navzájem a s analytickými daty.